microbius
РОССИЙСКИЙ МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЙ ПОРТАЛ
Поиск
rss

ООО "АЛИФАКС"

ИНН 7718314415

ID 2Vtzqx7tLnC

Реклама

ООО "АЛИФАКС"

ИНН 7718314415

ID 2VtzqwzYS9e

Реклама

ООО "АЛИФАКС"

ИНН 7718314415

ID 2VtzqvtsLHv

Реклама

Новости

Новости РФ
Новый набор плазмид упростит генетическую модификацию метилотрофных дрожжей
#плазмиды #метилотрофы #биотехнологии #crispr
Система CRISPR-Cas9 адаптирована для геномного редактирования множества разных организмов, однако существующие подходы к генетической модификации довольно трудоемки и часто низкоэффективны.     В частности, такая проблема существовала и в случае метилотрофных дрожжей, широко используемых для производства ценных в фармакологии и пищевой промышленности белков. Сотрудники ФИЦ Биотехнологии РАН с коллегами разработали набор плазмид, доставляющих в клетки гены компонентов CRISPR-Cas9 в виде отдельных молекул ДНК, которые объединяются в одну генетическую конструкцию прямо в дрожжах.    Это позволило значительно упростить процедуру геномного редактирования и достичь высокой эффективности введения CRISPR-Cas9 в дрожжевые клетки. Результаты работы опубликованы на страницах International Journal of Molecular Sciences. Исследование выполнено в рамках проекта Федеральной научно-технической программы развития генетических технологий и поддержана национальным проектом «Наука и университеты».    Дрожжи с давних пор используются человеком, например, в виноделии и при приготовлении хлеба. Они также стали одним из важнейших объектов биотехнологии. В частности, так называемые метилотрофные дрожжи родов Ogataea и Komagataella оказались чрезвычайно востребованы для наработки белков, используемых в фармакологии и пищевой промышленности. При этом «заставить» дрожжи производить не свойственные им, но нужные человеку молекулы, можно, «вставив» интересующий ген в геном этих микроскопических грибов. Еще более широкие возможности открывает технология редактирования генома CRISPR-Cas9, которая позволяет значительно перестроить метаболизм клеток.    CRISPR-Cas9 представляет собой систему бактериального иммунитета, поскольку с ее помощью микроорганизмы «запоминают» чужеродные ДНК и РНК, например, принадлежавшие вирусам, которые пытались когда-либо проникнуть в клетку. Принцип «запоминания» заключается в том, что белки Cas, с одной стороны, просто уничтожают чужеродные последовательности, чтобы предотвратить заражение, а с другой вырезают из генома патогена фрагменты, которые затем встраиваются в CRISPR-кассету — по сути, коллекцию генетических участков всех тех интервентов, с которыми столкнулась бактерия. Далее с CRISPR-кассеты синтезируются молекулы РНК, которые вместе с белком Cas9 «патрулируют» клетку и ищут уже знакомые генетические последовательности «врагов».    Ученые адаптировали CRISPR-Cas9 систему для того, чтобы встраивать с ее помощью чужеродные, но зачастую ценные с точки зрения биотехнологии гены не только в клетки бактерий, но и дрожжей, растений и даже животных. Таким образом уже удается создавать устойчивые к болезням сорта сельскохозяйственных культур и улучшенные породы животных, а также лечить (пока не массово) тяжелые заболевания людей, например серповидноклеточную анемию и β-талассемию. Однако существующие подходы геномного редактирования, в том числе и для клеток дрожжей, довольно трудоемки и неудобны в использовании.    Сотрудники ФИЦ Биотехнологии РАН (Москва) вместе с коллегами из Курчатовского института (Москва) предложили подход, который значительно упростит процесс редактирования генома при помощи системы CRISPR-Cas9 у метилотрофных дрожжей. За основу авторы взяли две искусственные плазмиды — кольцевые молекулы ДНК, — одна из которых несла ген, кодирующий белок Cas9, а вторая — короткую РНК, распознающую место в геноме, которое нужно «отредактировать». Кроме того, в последовательности включили бактериальные гены, обеспечивающие устойчивость к антибиотику генетицину. Эти гены служили своеобразным маркером, с помощью которого можно было точно выявить те дрожжевые клетки, в которых вставка плазмид произошла успешно. Так, если дрожжи оказывались способны расти на среде с антибиотиком, значит, в них также присутствовала система CRISPR-Cas9.    Исследователи одновременно ввели в клетки дрожжей две вышеописанные плазмиды, предварительно разрезав особым образом — так, чтобы они смогли «найти» друг друга в клетке и соединиться концевыми участками в единую последовательность. Образовавшаяся в результате единая плазмида поддерживалась в клетках дрожжей автономно, то есть без внедрения в хромосому. После того, как доставленная таким образом система CRISPR-Cas9 выполнила свою функцию по редактированию генов, плазмида удалялась. Авторы продемонстрировали эффективность предложенного подхода, успешно отредактировав геномы четырех видов метилотрофных дрожжей: Ogataea polymorpha, O. parapolymorpha, O. haglerorum и Komagataella phaffii.    «Потенциально наша система может использоваться для изменения одновременно нескольких генов, однако это нам еще предстоит проверить в новых экспериментах. Вместе с тем, уже сейчас у нас есть хороший инструмент для редактирования геномов метилотрофных дрожжей, что расширяет возможности их использования для создания штаммов-продуцентов рекомбинантных белков и применения к ним методов метаболической инженерии», — рассказывает один из авторов исследования, Михаил Агафонов, д.б.н., руководитель группы генной инженерии низших эукариот ФИЦ Биотехнологии РАН.
Партнерский материал
E-тесты для определения чувствительности микроорганизмов к антибиотикам
#определение чувствительности к антибиотикам #микробиологические методы #е-тесты
Е-тест (ETEST®) — хорошо продуманный метод для определения антибиотикочувствительности.    Признанные во всем мире благодаря своей доказанной эффективности, готовые к использованию индикаторные полоски ETEST® определяют МИК количественным диффузионным методом. ETEST® представляет собой пластиковую полоску с заранее заданным стабильным градиентом из 15 концентраций антимикробного препарата. Это простой и экономичный метод, дающий подчас более точные результаты, чем автоматизированные анализаторы определения чувствительности к антибиотикам или метод Кирби-Бауэра. - Определение МИК для прихотливых, медленно растущих или испытывающих дефицит питания микроорганизмов- Подтверждение или определение низких уровней резистентности или новых механизмов резистентности- Тестирование новых/не применяемых в повседневной практике антимикробных препаратов- Точный подбор антибактериальной терапии Е-тест — уникальная запатентованная методика, принцип которой состоит в том, что на пластиковую тест-полоску нанесены последовательные разведения антибиотика от меньшего к большему. Процедура проведения теста проста: - положите полоску на инокулированную чашку с агаром и инкубируйте.- после инкубации появится эллипс, который пересекает шкалу значений МИК (в мкг/мл) в том месте, где концентрация тестируемого антибиотика подавляет рост микроорганизмов.- полученное значение соответствует МИК, которая может быть использована для выбора оптимальной схемы лечения пациента. ETEST® дает полный спектр МИК, охватывающий 15 двойных разведений для концентраций, которые идеально подходят для уточнения тактики лечения пациентов в тех случаях, когда обычные методы AST имеют одно из следующих ограничений: - представлены результаты только категории S, I или R- результаты определения МИК выходят за пределы шкалы (например, «<» или «>») и дают недостаточно данных для выбора дозы препарата с учетом показателей фармакокинетики/фармакодинамики Е-тесты это: Свыше 100 антимикробных препаратов следующих категорий: антибиотики, противогрибковые, противотуберкулезные препараты и определение антимикробной резистентности.Стабильный градиент концентраций антимикробного препарата сопряжен с длительным сроком годности (до 5 лет), поэтому в лабораториях можно иметь под рукой редко запрашиваемые препараты для быстрого тестирования.Простота использования в большинстве клинических лабораторий.Установленная чувствительность метода с половинным разведением.Возможность для лабораторий получать данные по чувствительности большинства прихотливых микроорганизмов, которые не могут быть получены с помощью систем на основе микроразведений в бульоне. Универсальность – лучшее дополнение к основной системе определения чувствительности к антибиотикам В большинстве клинических лабораторий используют коммерческие автоматизированные системы или диско-диффузионный метод. Часто этого достаточно, поскольку большинство основных систем AST покрывают около 90% потребностей в таких тестах. ETEST® — лучший дополнительный метод для удовлетворения оставшихся ~10% потребностей в тестировании. Этот метод прост и экономичен; полоски со стабильным градиентом концентраций антимикробного препарата имеют длительный срок годности (до 5 лет), что позволяет иметь под рукой редко запрашиваемые препараты для быстрого анализа. Тестирование новых препаратов- Тестирование сложных микроорганизмов, которые нельзя тестировать с помощью основных методов AST (например, прихотливые, анаэробные микроорганизмы, ограничения основного метода AST и др.)- Определение низких уровней резистентности, гетерорезистентности- Определение или подтверждение фенотипов антимикробной устойчивости, таких как БЛРС, МБЛ*, AmpC** или GISA/hGISA**- Определение широкого спектра МИК (за пределами пограничных значений) для выбора и оптимизации лечения тяжелобольных пациентов (например, инфекции с множественной лекарственной устойчивостью).Варианты размещения полосок на питательную среду в чашке Присылайте ваши запросы на info@microbius.ru
Узнайте о новостях и событиях микробиологии
Первыми получайте новости и информацию о событиях
up