microbius
РОССИЙСКИЙ МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЙ ПОРТАЛ
Поиск
rss

ООО "АЛИФАКС"

ИНН 7718314415

ID 2Vtzqx7tLnC

Реклама

ООО "АЛИФАКС"

ИНН 7718314415

ID 2VtzqwzYS9e

Реклама

ООО "АЛИФАКС"

ИНН 7718314415

ID 2VtzqvtsLHv

Реклама

Новости

Новости
Изучение роли перорального валацикловира в лечении герпетического энцефалита
#валацикловир #герпетический энцефалит #ацикловир #вирус простого герпеса 2 #вирус простого герпеса 1
Энцефалит, вызванный вирусом простого герпеса (HSE), вероятно, является самой серьезной герпетической инфекцией, с которой могут столкнуться пациенты.     Варианты лечения HSE очень ограничены, единственным утвержденным (в США) противовирусным препаратом для лечения этой разрушительной инфекции является внутривенный ацикловир. Учитывая логистику длительного внутривенного лечения, клиницисты проявляют интерес к пероральному валацикловиру для упрощения лечения пациентов с клиническим улучшением. Учитывая ограниченные данные, применение перорального валацикловира при HSE требует дальнейшего обсуждения.    HSE - это воспаление паренхимы головного мозга в результате инфицирования вирусом простого герпеса. Ежегодная заболеваемость HSE составляет примерно один случай на 250 000-500 000 человек во всем мире. Без лечения риск смертельного исхода составляет 70%, но даже при своевременной диагностике и лечении риск оценивается от 20% до 30%. HSV - это двухцепочечные ДНК-вирусы, принадлежащие к подсемейству альфа-герпесвирусов семейства Herpesviridae. Существует два вируса HSV - HSV-1 и HSV-2, оба передаются от человека к человеку через слизистые оболочки или поврежденные кожные покровы и вызывают пожизненные инфекции. HSV-1 обычно распространяется при прямом контакте с выделениями из полости рта или герпетическими поражениями, в то время как HSV-2 распространяется при половом контакте. Инфекции HSV-1 вызывают энцефалит чаще, чем HSV-2, и ответственны примерно за 10%-20% случаев вирусного энцефалита в США.    Патогенез HSE изучен недостаточно хорошо, но может быть результатом первичной инфекции, реактивации латентной инфекции или реинфекции другим штаммом. После вторжения в центральную нервную систему (ЦНС) разрушение нейронов опосредуется иммунной системой или прямым вирусным повреждением. HSV может попасть в мозг из периферического очага или в результате виремии, что приводит к острому или подострому началу HSE. После инфицирования мозга могут появиться ранние признаки и симптомы в виде лихорадки, недомогания, головной боли и тошноты. Более тяжелые клинические проявления включают изменение психики, неврологические симптомы и судороги. Несмотря на получаемое лечение, инвалидность или неврологические нарушения возникают более чем у половины пациентов с HSE.    Терапия HSE включает в себя быстрое начало внутривенного введения ацикловира. Раннее выявление HSE и начало применения ацикловира необходимы для снижения летальности и улучшения клинических исходов; однако выявление HSE затруднено из-за отсутствия у него уникальных клинических признаков. Поэтому ацикловир рекомендуется принимать всем пациентам с подозрением или диагнозом HSE.    После введения ацикловир трифосфорилируется внутриклеточно с образованием его активной формы - ацикловир трифосфата, который конкурирует с дезоксигуанозинтрифосфатом за вирусную ДНК-полимеразу и встраивается в вирусную ДНК. Включение трифосфата ацикловира в вирусную ДНК приводит к остановке синтеза цепи ДНК, предотвращая синтез ДНК и вирусную репликацию.    Хотя ацикловир внутривенно эффективен против HSE, лечение требует внутривенного доступа и является дорогостоящим. Таким образом, терапия, которая является менее инвазивной и доступна в амбулаторных условиях, является преимуществом. Это дает основание для использования валацикловира, производного ацикловира.    Для того чтобы препарат был эффективен при инфекции ЦНС, необходимо достичь адекватных концентраций в спинномозговой жидкости (СМЖ). Средняя 50% ингибирующая концентрация (IC50) ацикловира против вирусов герпеса составляет от 0,07 до 0,97 г/мл. Средняя концентрация ацикловира в плазме крови при приеме 10 мг/кг каждые 8 часов составляет приблизительно 23 г/мл. Поскольку 50% плазменной концентрации ацикловира присутствует в СМЖ, его уровень значительно превышает IC50 для вирусов герпеса. Из-за низкой биодоступности ацикловира при пероральном приеме его концентрация в плазме составляет лишь 15-30 % от той, которая достигается при внутривенном введении ацикловира, что приводит к уровням, недостаточным для лечения инфекций ЦНС.     В отличие от этого, пероральный валацикловир в высоких дозах (HDVA) может достигать таких же концентраций в плазме, как и ацикловир внутривенно, поскольку валацикловир обладает лучшей биодоступностью. В доклинических фармакокинетических исследованиях, проведенных на здоровых добровольцах, валацикловир в дозе от 1,5 до 2 г четыре раза в день достигал сходной концентрации по сравнению с внутривенным ацикловиром 10 мг/кг каждые 8 часов.    Отдельное фармакокинетическое исследование во Вьетнаме включало взрослых пациентов с предположительным диагнозом HSE для начала лечения валацикловиром по 1 000 мг три раза в день. Для оценки достижения адекватного уровня ацикловира в СМЖ анализировалась плазма, а также уровни в СМЖ. В исследовании приняли участие девять пациентов, но только четыре пациента завершили полный курс лечения продолжительностью 21 день. Из тех, кто не завершил исследование, у двух пациентов были отрицательные результаты ПЦР-теста СМЖ на HSV, два пациента умерли и один пациент отказался от участия в исследовании.     Пероральный валацикловир достигал адекватных концентраций в течение всего периода исследования. Однако проникновение ацикловира в СМЖ снизилось во время лечения. Соотношение концентрации СМЖ/плазма снизилось с 22,9% на 2-й день до 12% на 20-й день. Вероятно, это было связано с уменьшением проникновения ацикловира в СМЖ по мере улучшения состояния пациента. Следует отметить, что на 20-й день средняя концентрация ацикловира в СМЖ все еще превышала IC50 для большинства клинических изолятов HSV. У всех пациентов, которые оставались в исследовании до 10-го дня, ПЦР-тесты на HSV были отрицательными.    В 2011 году нехватка ацикловира для внутривенного введения заставила клиники США принять меры по сохранению его использования для тех, кто получит наибольшую пользу от терапии. В отчете Северо-Западного мемориального госпиталя описывается их опыт борьбы с этим дефицитом. Частью их плана было применение HDVA в дозе 6 г в день для лечения предполагаемого вирусного синдрома у пациентов, не соответствующих строгим критериям для введения ацикловира внутривенно.     Авторы ретроспективно проанализировали пациентов, получавших HDVA, чтобы оценить результаты. Пятнадцать пациентов получали HDVA в течение периода наблюдения, включая трех пациентов с подтвержденной инфекцией ЦНС HSV и одного пациента с энцефалитом, вызванным Varicella zoster. Средняя суточная доза валацикловира составила 3 г, средняя продолжительность терапии - 11 дней. Из тех, кто лечился с помощью HDVA, у двух пациентов возникли неврологические последствия, а один был повторно госпитализирован в течение 30 дней из-за бактериемии. Самым распространенным нежелательным побочным эффектом была тромбоцитопения, за которой следовали головная боль, тошнота и сыпь. Ни одному пациенту не потребовалось прекращение лечения или дополнительное лечение из-за неблагоприятных побочных эффектов.    Имеется несколько сообщений об успешном применении перорального валацикловира для лечения HSE после первоначального лечения ацикловиром внутривенно. Одно из сообщений относится к 12-летнему ребенку, у которого на фоне внутривенного введения ацикловира появилась сыпь. Пациент был переведен на валацикловир 1 000 мг три раза в день в течение последних 10 дней лечения, который хорошо переносился.    Очевидно, что до широкого распространения перорального валацикловира для терапии HSE необходимо провести дополнительную работу. Дополнительные исследования по оценке перорального валацикловира при HSE могут превратить потенциал в реальность, но до тех пор лечением выбора является внутривенный ацикловир, а пероральный валацикловир может рассматриваться только в каждом конкретном случае. Литература: Bradshaw MJ, Venkatesan A. Neurotherapeutics. 2016;doi:10.1007/s13311-016-0433-7.Chan PKS, et al. Hong Kong Med J. 2000;6(1):119-121.Cunha BA, Baron J. J Chemother. 2017;doi:10.1179/1973947815Y.0000000065.Jacobson MA. J Med Virol. 1993;doi:10.1002/jmv.1890410529.McLaughlin MM, et al. Infect Dis Ther. 2017; doi:10.1007/s40121-017-0157-y.Pouplin T, et al. Antimicrob Agents Chemother. 2003;doi:10.1128/AAC.01023-10.Skelly MJ, et al. Antivir Chem Chemother. 2012; doi:10.3851/IMP2129.
Аннотация
Микробный состав компонентов яиц и его связь с выводимостью кур-несушек (аннотация)
#микробиота куриных яиц #куриные яйца
Яйцо - это биологическая система, призванная обеспечить здоровье эмбриона и позволить ему успешно вылупиться в цыпленка.    Яйца домашней птицы как ключевая часть рациона питания человека потребляются во всем мире. Потребителей все больше волнует качество яиц, которое связано с безопасностью продуктов питания. С одной стороны, яйца могут быть средством передачи патогенов, вызывающих заболевания пищевого происхождения, таких как Salmonella и Escherichia coli. С другой стороны, яйца также могут служить связующим звеном для распространения микробиоты от курицы к цыплятам.    Во время инкубации яйца обеспечивают питательные вещества и другие необходимые условия для роста и развития эмбриона. Однако не каждый эмбрион успешно развивается в цыпленка. Факторы, влияющие на рост эмбриона, включают в себя влияние матери (порода, возраст и состояние питания матери), качество спермы петуха, условия инкубации (такие как температура, влажность, свет и вентиляция) и качество яиц (включая вес яйца, толщину скорлупы, пористость и индекс формы). В производстве часто наблюдаются большие различия в выводимости среди цыплят, даже если куры были одной породы, одного возраста, выращены в одинаковых условиях и если их фертильные яйца имеют сходное качество. Поэтому необходимо учитывать влияние внутренних составляющих яйца на выводимость.    Рост и развитие куриных эмбрионов зависят от незаменимых аминокислот, липидов, углеводов и минералов, хранящихся в яйцах. Яичный желток является основным источником питательных веществ для роста эмбриона и влияет на жизнеспособность эмбриона. Белок яйца в основном играет роль в сопротивлении бактериальному вторжению и обеспечивает эмбрион питательными веществами, которые необходимы для начала развития эмбриона. Несколько исследований подтвердили, что определенные функциональные белки в яйцах могут влиять на выводимость. Другие исследования на млекопитающих показали, что микробиота из различных участков матери во время беременности может потенциально влиять на здоровье и пассивный иммунитет потомства. Плацентарная микробиота влияет на исходы беременности и играет пока неизвестную роль в раннем эмбриональном развитии.    Изначально яичный белок считался стерильным. Однако недавнее исследование обнаружило микроорганизмы внутри яичного белка. Наличие микроорганизмов также было подтверждено в яичных желтках. Яйца формируются в репродуктивном тракте матери, а эмбрион в яйце растет и развивается в цыпленка после 21 дня инкубации. Предыдущие исследования подтвердили наличие микроорганизмов в материнском репродуктивном тракте и пищеварительном тракте 1-дневных цыплят. Несколько исследований показали, что микробы кишечника и фекалий кур связаны как с формированием яиц, так и с фертильностью. Это позволяет предположить, что микроорганизмы могут оказывать влияние на репродуктивные признаки или на яйца кур. Хотя стало ясно, что желток и белок яйца не являются стерильными, микробный состав желтка и белка в свежих и инкубационных яйцах, а также их влияние на выводимость остаются неизвестными.    Поэтому в данном исследовании мы провели секвенирование гена 16S рРНК в 144 образцах яичного белка и желтка, чтобы охарактеризовать микробный состав свежих и инкубированных яиц. Кроме того, мы сравнили различия между яичными белками и желтками и проанализировали изменения в микробном составе по мере инкубации яиц. Далее мы определили микроорганизмы, связанные с ростом эмбриона, которые были по-разному представлены в группах с высокой и низкой выводимостью. Результаты этого исследования расширят наше понимание микробного состава яиц и позволят получить дополнительные сведения о развитии эмбриона.    Для исследования мы выбрали яйца в двух состояниях: свежие яйца и яйца, которые инкубировались в течение 12 дней. Наше исследование показало, что желток и белок яиц не свободны от микроорганизмов, что согласуется с утверждением о том, что яйца не формируются в стерильной среде. Ранее мы охарактеризовали микробиоту кишечника 1-дневных цыплят, поэтому одной из целей данного исследования было восполнить пробел между исследованиями микробиоты у кур и цыплят. Чтобы уменьшить влияние контаминантов из окружающей среды было проведено множество мероприятий. Поверхность яиц была стерилизована. Инкубатор и соответствующее помещение были заранее продезинфицированы для обеспечения стерильной среды, экспериментальные материалы, включая пробирки и наконечники микропипеток, также были продезинфицированы. Кроме того, все операции, такие как взятие яичного белка и выделение ДНК, проводились в стерильном вытяжном шкафу. Кроме того, согласно нашим результатам, мы в основном сосредоточились на микроорганизмах с относительно высокой численностью, следы микроорганизмов окружающей среды не могли повлиять на результаты.    Мы охарактеризовали микробиоту желтков и белков яиц кур. Как и ожидалось, количество вариантов последовательностей ампликонов в желтках было больше, чем в белках яиц, что подтверждает данные о том, что белки яиц обладают антимикробными свойствами, включая препятствующее влияние овомуцина на передвижение микроорганизмов и ингибирование микроорганизмов функциональными белками и щелочной средой в белках яиц. По сравнению с яичным желтком яичный белок содержит менее разнообразное микробное сообщество.     Аналогично, магнум, место формирования яичного белка, также имеет очень низкое микробное разнообразие из-за секреции лизоцима и других антимикробных белков. Можно предположить, что во время формирования яичного белка часть микробиоты курицы и антимикробных веществ переносится в яичный белок. Некоторые исследования показали, что микробное разнообразие может меняться на разных участках яйцевода.    Исследования показали, что по мере развития куриного эмбриона количество микроорганизмов кишечника увеличивается, что согласуется с изменениями микроорганизмов яичного желтка в нашем исследовании. С точки зрения микробного состава, наш анализ показал, что более 80% микробиоты составляли представители филумов Proteobacteria, Firmicutes, Actinobacteria и Bacteroidetes, причем Proteobacteria были самыми многочисленными в каждой группе, что повторяет предыдущие исследования эмбрионального кишечника.    Большинство выявленных микроорганизмов являлись факультативными анаэробами благодаря наличию кислорода в яйцах. Поглощая кислород, изменяя pH и снижая окислительно-восстановительный потенциал, факультативные бактерии, такие как некоторые виды Proteobacteria, создают благоприятные условия для колонизации анаэробных бактерий. Потребление кислорода аэробными бактериями создает анаэробную среду, которая способствует росту и колонизации анаэробных бактерий в кишечном тракте цыплят. Имеются данные о том, что кишечник цыплят сначала колонизируется факультативными анаэробными бактериями, а затем заменяется анаэробными бактериями.    Альфа-разнообразие яичного белка уменьшалось на протяжении всей инкубации, что привело к более однообразному микробному составу. Яичный белок содержит различные антимикробные соединения, а внешняя и внутренняя мембраны яичной скорлупы содержат следы антибактериальных молекул, которые подавляют рост и миграцию бактерий. Напротив, в желтках яиц наблюдалось незначительное увеличение микробного богатства на все протяжении инкубирования. В яичном белке также было обнаружено 423 вида, относительное обилие которых уменьшалось по мере инкубации, в то же время относительное обилие этих видов в желтке увеличивалось. Можно сделать вывод, что миграция микробиоты из яичного белка в желток обеспечивает бактериям доступ к пулу питательных веществ. Следовательно, при соответствующей температуре во время инкубации наблюдался быстрый рост. Это может привести к увеличению микробного разнообразия в яичном желтке после 12 дней инкубации.    Чтобы установить разницу в микробном составе между желтком и белком, мы провели одновременный дифференциальный анализ микроорганизмов на всех таксономических уровнях. В филуме Actinobacteria наиболее распространенным родом был Rhodococcus. Rhodococcus является не только источником полезных ферментов, но и обладает разнообразными метаболическими возможностями, включая расщепление токсичных химических веществ, поглощение и производство применимых соединений. Бактероиды были более многочисленны в яичном желтке, чем в белке. Бактероиды хорошо известны своей ролью в расщеплении биополимеров и углеводов, особенно полисахаридов, в организме млекопитающих. Для выживания микробиоты необходимы питательные вещества из желтка яйца, но оставшиеся питательные вещества истощаются по мере инкубации, что приводит к снижению численности микробов, таких как Bacteroidetes. На поздних стадиях инкубации род Pseudomonas и соответствующий ему филум Proteobacteria имели более высокую относительную численность.     Таким образом, в настоящем исследовании проведено секвенирование гена 16S рРНК микробиоты яичных белков и желтков и продемонстрированы состав и различия в численности микроорганизмов в яичных желтках и белках, а также влияние инкубации на микробное сообщество. Микробное разнообразие в яичном белке было ниже, чем в желтке, а микробный состав яичного белка был более однородным после 12 дней инкубации. Rothia и Muribaculaceae были родами, которые играли важную роль в скорости вылупления. Эти наблюдения могут пролить новый свет на микробный состав яиц и поиск факторов, связанных с вылуплением. Это также служит связующим звеном между материнскими, эмбриональными и микробными исследованиями цыплят.
Узнайте о новостях и событиях микробиологии
Первыми получайте новости и информацию о событиях
up